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ELISA酶聯免疫吸附試驗方法 β2-微球蛋白ELISA試劑盒

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ELISA應用:ELISA檢測技術早在19世紀70,80年代就開發(fā)出來用于替代放射性同位素標記技術用于研究蛋白質間的相互作用(配體-受體,抗原-抗體),到如今已經接近50年的歷史了。這個技術從科研的角度來說已經不具備**性,沒有太多的價值,不值得專門進行研究,更多的是一個使用的工具。工業(yè)應用落后于基礎研究,ELISA技術在制藥領域的應用隨著近20年生物制藥領域的迅猛發(fā)展展現著越來越多的使用價值,當然ELISA的應用情況也越來越復雜,這樣的復雜性也使得早期的基礎研究并不再具有很好的指導意義,ELISA方法濫用錯用往往導致實驗結果出現系統(tǒng)性偏差,影響實驗結果的真實性,做出錯誤的選擇。本文的寫作目的旨在作為文獻之外關于ELISA實際應用的一個總結,反補基礎研究的不足,使得該技術更具使用價值。

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●分子實驗中常用生化試劑原理匯總● 5.在用乙醇沉淀DNA時,為什么一定要加NaAc或NaCl至終濃度達0.1~0.25mol/L?在pH為8左右的溶液中,DNA分子是帶負電荷的,加一定濃度的NaAc或NaCl,使Na+中和DNA分子上的負電荷,減少DNA分子之間的同性電荷相斥力,易于互相聚合而形成DNA鈉鹽沉淀,當加入的鹽溶液濃度太低時,只有部分DNA形成DNA鈉鹽而聚合,這樣就造成DNA沉淀不完全,當加入的鹽溶液濃度太高時,其效果也不好。在沉淀的DNA中,由于過多的鹽雜質存在,影響DNA的酶切等反應,必須要進行洗滌或重沉淀。 6.加核糖核酸酶降解核糖核酸后,為什么再要用SDS與KAc來處理?加進去的RNase本身是一種蛋白質,為了純化DNA,又必須去除之,加SDS可使它們成為SDS-蛋白復合物沉淀,再加KAc使這些復合物轉變?yōu)槿芙舛雀〉拟淃}形式的SDS-蛋白質復合物,使沉淀更加完全。也可用飽和酚、氯仿抽提再沉淀,去除RNase。在溶液中,有人以KAc代替NaAc,也可以收到較好效果。 7.為什么在保存或抽提DNA過程中,一般采用TE緩沖液?在基因操作實驗中,選擇緩沖液的主要原則是考慮DNA的穩(wěn)定性及緩沖液成分不產生干擾作用。磷酸鹽緩沖系統(tǒng)(pKa=7.2)和硼酸系統(tǒng)(pKa=9.24)等雖然也都符合細胞內環(huán)境的生理范圍(pH),可作DNA的保存液,但在轉化實驗時,磷酸根離子的種類及數量將與Ca2+產生Ca3(PO4)2沉淀;在DNA反應時,不同的酶對輔助因子的種類及數量要求不同,有的要求高離子濃度,有的則要求低鹽濃度,采用Tris-HCl(pKa=8.0)的緩沖系統(tǒng),由于緩沖液是TrisH+/Tris,不存在金屬離子的干擾作用,故在提取或保存DNA時,大都采用Tris-HCl系統(tǒng),而TE緩沖液中的EDTA更能穩(wěn)定DNA的活性。 8.如何選擇聚乙二醇(6000)的濃度來沉淀DNA?采用PEG(6000)沉淀DNA,大小不同的DNA分子所用的PEG的濃度也不同,PEG的濃度低,選擇性沉淀DNA分子量大,大分子所需PEG的濃度只需1%左右,小分子所需PEG濃度高達20%。本實驗選擇性沉淀4.3kb的pBR322質粒DNA,每毫升加入0.4毫升的30% PEG,其終PEG濃度為12%。PEG選擇性沉淀DNA的分辨率大約100bp。 9.抽提DNA去除蛋白質時,怎樣使用酚與氯仿較好?酞與氯仿是非極性分子,水是極性分子,當蛋白水溶液與酚或氯仿混合時,蛋白質分子之間的水分子就被酚或氯仿擠去,使蛋白失去水合狀態(tài)而變性。經過離心,變性蛋白質的密度比水的密度為大,因而與水相分離,沉淀在水相下面,從而與溶解在水相中的DNA分開。而酚與氯仿有機溶劑比重更大,保留在下層。作為表面變性的酚與氯仿,在去除蛋白質的作用中,各有利弊,酚的變性作用大,但酚與水相有一定程度的互溶,大約10%~15%的水溶解在酚相中,因而損失了這部分水相中的DNA,而氯仿的變性作用不如酚效果好,但氯仿與水不相混溶,不會帶走DNA。所以在抽提過程中,混合使用酚與氯仿效果好。經酚**次抽提后的水相中有殘留的酚,由于酚與氯仿是互溶的,可用氯仿**次變性蛋白質,此時一起將酚帶走。也可以在**次抽提時,將酚與氯仿混合(1:1)使用。

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編輯:小檀20180925